细胞描述:
MV-4-11细胞系由Rovera课题组建立,来源于一名患有人双表型髓性单核细胞白血病(biphenotypic B myelomonocytic leukemia)的10岁男孩的外周血。Interleukin (IL)-3可以独立地支持该细胞长期生长,使用10%FBS培养时则不需要额外添加IL-3。但是,在IL-3和生长因子Granulocyte/Macrophage Colony-Stimulating Factor(GM-CSF)均处于低浓度的情况下,IL-3会抑制MV-4-11细胞的增殖。
生长因子Granulocyte Colony Stimulating Factor(G-CSF)会协同GM-CSF促进MV-4-11细胞的增殖,而单独的G-CSF会短暂刺激该细胞系。据文献[PubMed: 3500218]报道,间接免疫荧光法检测髓性单核细胞抗原CD15,超过96%的该细胞为阳性,40~96%为单核细胞抗原CD4阳性,4-11%为单核细胞抗原CD10阳性。
细胞特性:
1) 来源:男性,10岁 外周血
2) 形态:成淋巴细胞状,悬浮生长
3) 规格:1×106cells
4) 培养条件:IMDM+10%FBS(特级胎牛血清)+1%P/S (推荐货号AW-MCH478)
空气,95%;二氧化碳,5%
37℃
5) 【注意事项】:
a)该细胞为悬浮细胞,根据培养经验以及客户的反馈,传代时使用【半换液法】对细胞状态较为有利,因此我库建议您使用【半换液法】进行传代。同时,您在收到T25培养瓶发货的细胞后, 可以通过离心(1000rpm, 5min)离心收集细胞后, 添加8-10ml 按照要求配置的新鲜培养液, 然后将细胞吹打均匀后移入两个新的T25培养瓶中继续培养即可。
后续建议您使用【半换液法】进行传代。
b) 细胞对血清质量较为敏感,我库建议您使用进口大品牌优质血清进行培养。
c) 该细胞对细胞密度较为敏感,培养、传代时请注意保持细胞密度在合适的范围。细胞接种密度20万个/mL ,培养时维持细胞密度在10万-100万个/mL供应限制
细胞接收后的处理:
1) 收到细胞后,活细胞首先观察培养瓶是否完好,培养液是否漏液,培养基是否浑浊;冻存细胞是否干冰已挥发完,冻存管盖是否脱落,破碎,若有这类情况,请务必拍照记录,并于收货24h内与我们联系。
2) 细胞处理:
复苏的细胞:如果是T-25培养瓶活细胞,收到后请用75%的酒精对培养瓶表面进行消毒处理,然后转入培养箱中静置2~3h后再进行后续处理。
备注:运输用的培养基不宜再次用来培养细胞,请按照说明书新配置完全培养基来培养细胞。
冻存细胞:如果是干冰运输的冻存细胞,收到后请立即转入液氮存储或者短暂(24h)放置-80度冰箱保存,或者直接进行细胞复苏。
细胞复苏、传代及冻存流程参考:
1、 细胞复苏
1) 配制完全培养基:基础培养基+胎牛血清+双抗(特殊培养基特殊配置);
2) 细胞复苏:取5ml完全培养基于15ml离心管中,37℃水浴锅预热,从液氮管(或者-80度冰箱)中快速取出冻存的细胞,放入37℃水浴锅中,摇晃使快速化冻(1min左右),然后将化冻的细胞和预热的培养基,移入超净工作台中,化冻的细胞加入到含预热培养基的15ml离心管中,1000rpm离心5min;
3) 吸弃上清,得到细胞沉淀,用2ml完全培养基轻轻重悬细胞,加入到T25培养瓶中,做好标记,放入37℃,5%CO2饱和适度培养箱中培养(培养皿复苏效果更好);
4) 24h后,观察细胞贴壁情况(未贴壁的即为死细胞--针对贴壁细胞),吸弃旧培养基,加入新鲜的预热(室温或37℃)的完全培养基,继续培养。
2、 细胞传代
1) 待细胞生长到80%-90%汇合度时,吸弃旧的培养基,加入1ml无菌PBS润洗一次,以去除残余的培养基及血清(血清含有胰酶的抑制因子),然后加入1ml 0.25%胰酶,37℃培养箱中消化(1~2min左右,不同细胞消化时间不同),取出细胞,镜下观察细胞至细胞皱缩变圆;
2) 加入1ml完全培养基(含FBS)终止消化,轻轻拍打,使细胞脱落下来成单个细胞悬液,收集细胞于15ml无菌离心管中,1000rpm,离心5min;
3) 收集细胞沉淀,完全培养基重悬,一分为二(可根据细胞生长速度调整比例),分别加入到2个新的培养瓶中,做好标记,放入培养箱中培养。
3、细胞冻存
1) 按照细胞传代方法,在超净工作台内消化收集细胞沉淀,取少量细胞用于计数;
2) 用预冷的1ml冻存液(90%完全培养基+10%DMSO)或者无血清细胞冻存液重悬细胞,加入到1.2ml冻存管中,密度为1*106个/ml。
3) 放入程序冻存盒,-80℃过夜后,转入液氮长期保存。

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